RNAi干擾檢測 是指在進化過程中高度保守的、由雙鏈RNA（double-stranded RNA，dsRNA）誘發的、同源mRNA高效特異性降解的現象。基因沉默，主要有轉錄前水平的基因沉默(TGS)和轉錄后水平的基因沉默(PTGS)兩類:TGS是指由于DNA修飾或染色體異染色質化等原因使基因不能正常轉錄;PTGS是啟動了細胞質內靶mRNA序列特異性的降解機制。有時轉基因會同時導致TGS和PTGS。
RNAi干擾檢測 主體實驗：
一、成功將siRNA表達載體導入目的細胞
如果目的細胞的質粒轉染效率較低（低于70%），則應采用腺病毒或慢病毒載體，利用病毒載體的高感染率、高表達特性，更好地開展RNA干擾主體實驗。
二、設置好分組和對照
按照nature的標準，一個嚴格的RNAi介導knockdown實驗要有6個對照：
⒈轉染試劑對照（監控轉染及培養條件對結果的影響）；
⒉nonsense siRNA對照（監控外源核酸本身對結果的影響）；
⒊positive siRNA對照（監控假陰性）；
⒋技術重復對照（也叫off-target 對照，也就是利用至少2個靶點的siRNA同時實驗，2個siRNA互為off-target control，當兩者的表型相同時，才有可能是特異性的knockdown效應）；
⒌rescue 對照（knockdown之后做超表達，看是否有性狀的逆轉，這也是為了說明knockdown的特異性）；6.全表達組掃描對照（就是轉錄/表達芯片掃描，以zui終確定表型不是由于off-target造成）。
實際實驗中，全表達組掃描對照很少有文獻涉及。其它幾個對照中，1,2兩種對照即所謂的空白細胞對照、NC對照，基本是所有雜志都要求具備的。4,5兩種對照，主要是為了解決off-target效應，選做一種即可，一般建議選5，涉及的實驗即所謂的“RNA干擾回復實驗"。
三、RNA干擾效率的檢測（體外）
一般應該從mRNA水平、蛋白質水平、細胞表型水平三個層次來檢測干擾效率。
mRNA水平：RT-PCR、Real-time PCR；蛋白質水平：Western-blot、ELISA、免疫組化；細胞表型水平：MTT、克隆形成實驗、流式細胞檢測、細胞小室實驗等。RNA干擾效率在動物模型上的進一步驗證（體內） 動物模型實驗可以采取“體內法"和“體外法"。
體內法，即先做裸鼠成瘤模型，再將質粒或病毒導入裸鼠，檢測RNA干擾效果。此法操作復雜，對質粒和病毒產品的質和量要求都較高，但是比較貼近實際，說服力較顯著。體外法，即先將質粒或病毒導入腫瘤細胞，再將腫瘤細胞導入動物體內，然后檢測RNA干擾效果。此法操作較簡單，對質粒和病毒產品的質量要求較低，所以為大多數文獻所采用。建議采用此方法來進行動物模型水平的實驗。
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